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蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)

Multiplex Assay Kit for Protein Kinase C Beta 1 (PKCb1) ,etc. by FLIA (Flow Luminescence Immunoassay)

PKC-B1; PRKCB; PRKCB1

(注:单次混测多因子不超过8个指标 )

  • 蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法) 产品包装(模拟)
  • 蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法) 产品包装(模拟)
  • Certificate 通过ISO 9001、ISO 13485质量体系认证

特异性

本试剂盒用于检测蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法),经检测与其它相似物质无明显交叉反应。
由于受到技术及样本来源的限制,不可能完成对所有相关或相似物质交叉反应检测,因此本试剂盒有可能与未经检测的其它物质有交叉反应。

回收率

分别于定值血清及血浆样本中加入一定量的蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)(加标样品),重复测定并计算其均值,回收率为测定值与理论值的比率。

样本 回收率范围(%) 平均回收率(%)
serum(n=5) 89-97 94
EDTA plasma(n=5) 86-99 96
heparin plasma(n=5) 79-97 80
sodium citrate plasma(n=5) 95-102 98

精密度

精密度用样品测定值的变异系数CV表示。CV(%) = SD/mean×100
批内差:取同批次试剂盒对低、中、高值定值样本进行定量检测,每份样本连续测定20 次,分别计算不同浓度样本的平均值及SD值。
批间差:选取3个不同批次的试剂盒分别对低、中、高值定值样本进行定量测定,每个样本使用同一试剂盒重复测定8次,分别计算不同浓度样本的平均值及SD值。
批内差: CV<10%
批间差: CV<12%

线性

在定值血清及血浆样本内加入适量的蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法),并倍比稀释成1:2,1:4,1:8,1:16的待测样本,线性范围即为稀释后样本中蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)含量的测定值与理论值的比率。

样本 1:2 1:4 1:8 1:16
serum(n=5) 91-103% 84-102% 97-104% 99-105%
EDTA plasma(n=5) 86-99% 95-102% 86-95% 93-101%
heparin plasma(n=5) 95-103% 99-105% 87-95% 91-104%
sodium citrate plasma(n=5) 88-99% 89-98% 79-98% 80-104%

稳定性

经测定,试剂盒在有效期内按推荐温度保存,其活性降低率小于5%。
为减小外部因素对试剂盒破坏前后检测值的影响,实验室的环境条件需尽量保持一致,尤其是实验室内温度、湿度及温育条件。其次由同一实验员来进行操作可减少人为误差。

实验流程

1. 实验前标准品、试剂及样本准备;
2. 加样(标准品、样本、磁珠)标准品或样本100μL及磁珠10μL,
    37°C酶标板振荡器孵育90分钟;
3. 磁吸甩干,加检测溶液A100μL,37°C酶标板振荡器孵育60分钟;
4. 磁吸洗板3次;
5. 加检测溶液B100μL,37°C振动孵育30分钟;
6. 磁吸洗板3次;
7. 加鞘液100μL,旋涡震荡2分钟后读数。

实验原理

将蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)抗体包被于磁珠,制成固相载体,向微孔中分别加入标准品或标本以及磁珠,其中的蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)与连接于固相载体上的抗体结合,然后加入生物素化的蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)抗体,将未结合的生物素化抗体洗净后,加入PE标记的亲和素,再次彻底洗涤后即可上机读数。MFI值和样品中的蛋白激酶Cβ1(PKCb1)等多因子检测试剂盒(流式荧光发光法)呈正相关。

赠品

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参考文献

杂志 参考文献
Vascular Pharmacology Hesperetin ameliorates hyperglycemia induced retinal vasculopathy via anti-angiogenic effects in experimental diabetic rats [ScienceDirect: S1537189112000407]
Food and Chemical Toxicology Prevention and management of diabetic retinopathy in STZ diabetic rats by Tinospora cordifolia and its molecular mechanisms [PubMed: S0278691512004103]
Journal of ocular pharmacology and therapeutics Retinoprotective Effects of Moringa oleifera via Antioxidant, Anti-Inflammatory, and Anti-Angiogenic Mechanisms in Streptozotocin-Induced Diabetic Rats [Pubmed: 23215831]
Mol Cell Biochem. Effects of Trigonella foenum-graecum (L.) on retinal oxidative stress, and proinflammatory and angiogenic molecular biomarkers in streptozotocin-induced diabetic rats [Pubmed:24242137]
J Clin Diagn Res. Evaluation of Protein Kinase Cβ and PPARγ Activity in Diabetic Rats Supplemented with Momordica charantia [pmc:PMC4866090]
Journal of Clinical&Diagnostic Research Evaluation of Protein Kinase Cβ and PPARγ Activity in Diabetic RatsSupplemented with Momordica charantia. [pubmed:27190792]
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